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Anforderungen an Proben
Fragmentlängenanalyse
So bereiten Sie Ihre Proben für die Fragmentlängenanalyse vor
Volumen:
min. 10 µl pro Probe angeordnet in einer 96-well Platte.
- Verdünnen Sie Ihren Größenstandard 1:100 mit Hi-Di-Formamid
- Verteilen Sie 10 µl Größenstandard/Formamid-Mischung in einer ABI3730-kompatiblen 96-Well-Platte (4titude-Katalognr. 4ti-0730/C-SBC)
- Verdünnen Sie Ihr PCR-Produkt z.B. 1:2-1:100, um die gewünschte Signalintensität zu erreichen
- Geben Sie 1,2 µl verdünntes PCR-Produkt zu 10 µl Größenstandard/Formamid-Mix
- Leere Wells müssen mit destilliertem Wasser befüllt werden.
FrameStar 96, mit Aufkantung 4ti-0730/C-SBC
GeneScan 1200 LIZ
Dye Set Name | Matrix Type | Blue | Green | Yellow | Red | Orange |
Powerplex_4C | 4 dye | FAM | JOE | TAMRA | CXR | |
Powerplex_4C-RCT | 4 dye | FAM | JOE | TAMRA | CXR | |
DS-30_D | 4 dye | 6-FAM | HEX | NED | ROX | |
DS-30_D-RCT | 4 dye | 6-FAM | HEX | NED | ROX | |
DS-02_E5 | 5 dye | dR110 | dR6G | dTAMRA | dROX | LIZ |
DS-02_E5-RCT | 5 dye | dR110 | dR6G | dTAMRA | dROX | LIZ |
DS-33_G5 | 5 dye | 6-FAM | VIC | NED | PET | LIZ |
DS-33_G5-RCT | 5 dye | 6-FAM | VIC | NED | PET | LIZ |
Mic-G5 | 5 dye | FAM | ATTO532 | ATTO550 | ATTO565 | Dyomics630 |
Mic-G5-RCT | 5 dye | FAM | ATTO532 | ATTO550 | ATTO565 | Dyomics630 |
Zelllinien Authentifizierung
Zellpellets
Sammeln Sie 1 bis 5 Mio. Zellen und waschen Sie das Zellpellet zweimal in PBS oder einem anderen geeigneten Puffer. Resuspendieren Sie das Zellpellet in 0,5 ml 70-90%igem Ethanol und transferieren Sie es in ein 1,5 ml Schraubglas.
Isolierte DNA
Bitte stellen Sie ≥50 µl von 50 ng/µl gDNA in Tris- oder Low-EDTA-Puffer (10 mM Tris, 0,1 mM EDTA) bereit.
Kulturüberstand für Mycoplsma-Tests
Bitte senden Sie 1 ml des Kulturüberstandes (ohne Antibiotika, mindestens 3 Tage lang verwendet).
Mycoplasma Testing
Züchten Sie die Zellen für mindestens drei Tage (72 Stunden), ohne das Medium zu verändern, bevor Sie den Überstand zur Mykoplasma-Testung sammeln. Lassen Sie die Zellen eine Konfluenz von 80 - 90 % erreichen, aber nicht darüber hinaus, um eine mögliche Inhibition zu vermeiden.
Probenahme:
- Von adhärenten Zellkulturen: Sammeln Sie den Überstand direkt aus der Kulturflasche.
- Von Suspensionskulturen: Sammeln Sie die Zellen am Boden des Tubes, bevor Sie den Überstand entfernen. Stellen Sie sicher, dass der Überstand zellfrei ist, indem Sie eine Teilprobe zentrifugieren.
- Sammeln Sie 1000 μl des zellfreien Überstands in einem Schraubdeckelröhrchen oder einem ähnlichen Behälter, der einen dichten Verschluss während der Hitzeinaktivierung gewährleistet.
- Zentrifugieren Sie die Probe bei 750 x g für 2 Minuten, um verbleibende Zellen und Zelltrümmer abzupelletieren.
- Übertragen Sie 150 μl des Überstands in ein neues 1,5 ml Röhrchen mit Klappdeckel.
- Hitzeinaktivierung: Inkubieren Sie das Röhrchen mit dem Überstand für 10 Minuten bei 95°C.
- Beschriften Sie das Röhrchen mit einem Microsynth-Mykoplasma-Barcode-Etikett. Das Etikett kann im Webshop erworben werden.